Dziękujemy za odwiedzenie Nature.com. Wersja przeglądarki, której używasz, ma ograniczoną obsługę CSS. Aby uzyskać najlepsze rezultaty, zalecamy korzystanie z nowszej wersji przeglądarki (lub wyłączenie trybu zgodności w programie Internet Explorer). W międzyczasie, aby zapewnić stałe wsparcie, wyświetlamy witrynę bez stylów ani JavaScript.
Rośliny ozdobne o bujnym wyglądzie są wysoko cenione. Jednym ze sposobów na osiągnięcie tego jest użycieregulatory wzrostu roślinjako narzędzia do zarządzania wzrostem roślin. Badanie przeprowadzono na Schefflerze karłowatej (ozdobnej roślinie liściastej) traktowanej opryskami dolistnymikwas giberelinowyi hormonu benzyloadeniny w szklarni wyposażonej w system nawadniania mgłą. Hormon rozpylano na liście schefflery karłowatej w stężeniach 0, 100 i 200 mg/l w trzech etapach co 15 dni. Eksperyment przeprowadzono na podstawie czynnikowej w całkowicie losowym układzie z czterema powtórzeniami. Połączenie kwasu giberelinowego i benzyloadeniny w stężeniu 200 mg/l miało istotny wpływ na liczbę liści, powierzchnię liści i wysokość rośliny. Zabieg ten skutkował również najwyższą zawartością pigmentów fotosyntetycznych. Ponadto najwyższe stosunki rozpuszczalnych węglowodanów i cukrów redukujących zaobserwowano przy benzyloadeninie w stężeniu 100 i 200 mg/l oraz kwasie giberelinowym + benzyloadeninie w stężeniu 200 mg/l. Analiza regresji krok po kroku wykazała, że objętość korzeni była pierwszą zmienną, która weszła do modelu, wyjaśniając 44% zmienności. Następną zmienną była świeża masa korzeni, przy czym model dwuwymiarowy wyjaśniał 63% zmienności liczby liści. Największy pozytywny wpływ na liczbę liści miała świeża masa korzeni (0,43), która była dodatnio skorelowana z liczbą liści (0,47). Wyniki wykazały, że kwas giberelinowy i benzyloadenina w stężeniu 200 mg/l znacząco poprawiły wzrost morfologiczny, syntezę chlorofilu i karotenoidów u Liriodendron tulipifera oraz zmniejszyły zawartość cukrów i rozpuszczalnych węglowodanów.
Schefflera arborescens (Hayata) Merr to wiecznie zielona roślina ozdobna z rodziny araliowatych, pochodząca z Chin i Tajwanu1. Roślina ta jest często uprawiana jako roślina doniczkowa, ale w takich warunkach może rosnąć tylko jedna roślina. Liście mają od 5 do 16 listków, każdy o długości 10-20 cm2. Schefflera karłowata jest sprzedawana w dużych ilościach każdego roku, ale nowoczesne metody ogrodnicze są rzadko stosowane. Dlatego stosowanie regulatorów wzrostu roślin jako skutecznych narzędzi zarządzania w celu poprawy wzrostu i zrównoważonej produkcji produktów ogrodniczych wymaga większej uwagi. Obecnie stosowanie regulatorów wzrostu roślin znacznie wzrosło3,4,5. Kwas giberelinowy jest regulatorem wzrostu roślin, który może zwiększyć plony roślin6. Jednym z jego znanych efektów jest stymulacja wzrostu wegetatywnego, w tym wydłużanie łodygi i korzeni oraz zwiększenie powierzchni liści7. Najważniejszym efektem giberelin jest zwiększenie wysokości łodygi dzięki wydłużeniu międzywęźli. Opryskiwanie dolistne giberelinami roślin karłowych, które nie są w stanie ich produkować, powoduje zwiększenie wydłużania łodygi i wysokości rośliny8. Opryskiwanie dolistne kwiatów i liści kwasem giberelinowym w stężeniu 500 mg/l może zwiększyć wysokość rośliny, liczbę, szerokość i długość liści9. Donoszono, że gibereliny stymulują wzrost różnych roślin liściastych10. Wydłużanie łodygi obserwowano u sosny zwyczajnej (Pinussylvestris) i świerku białego (Piceaglauca), gdy liście opryskiwano kwasem giberelinowym11.
Jedno z badań dotyczyło wpływu trzech cytokininowych regulatorów wzrostu roślin na tworzenie się bocznych gałęzi u Lily officinalis. bend Eksperymenty przeprowadzono jesienią i wiosną, aby zbadać efekty sezonowe. Wyniki wykazały, że kinetyna, benzyloadenina i 2-prenyloadenina nie miały wpływu na tworzenie się dodatkowych gałęzi. Jednak 500 ppm benzyloadeniny spowodowało utworzenie odpowiednio 12,2 i 8,2 gałęzi pomocniczych w eksperymentach jesiennych i wiosennych, w porównaniu do 4,9 i 3,9 gałęzi w roślinach kontrolnych. Badania wykazały, że zabiegi letnie są skuteczniejsze niż zimowe12. W innym eksperymencie rośliny Peace Lily var. Tassone traktowano 0, 250 i 500 ppm benzyloadeniny w doniczkach o średnicy 10 cm. Wyniki wykazały, że zabieg glebowy znacznie zwiększył liczbę dodatkowych liści w porównaniu do roślin kontrolnych i traktowanych benzyloadeniną. Nowe dodatkowe liście obserwowano cztery tygodnie po zabiegu, a maksymalną produkcję liści obserwowano osiem tygodni po zabiegu. Po 20 tygodniach po zabiegu rośliny traktowane glebą miały mniejszy przyrost wysokości niż rośliny traktowane wstępnie13. Zgłoszono, że benzyloadenina w stężeniu 20 mg/l może znacznie zwiększyć wysokość roślin i liczbę liści u Croton 14. W przypadku lilii calla benzyloadenina w stężeniu 500 ppm skutkowała wzrostem liczby gałęzi, podczas gdy liczba gałęzi była najmniejsza w grupie kontrolnej15. Celem tego badania było zbadanie opryskiwania dolistnego kwasem giberelinowym i benzyloadeniną w celu poprawy wzrostu Schefflera dwarfa, rośliny ozdobnej. Te regulatory wzrostu roślin mogą pomóc producentom komercyjnym zaplanować odpowiednią produkcję przez cały rok. Nie przeprowadzono żadnych badań mających na celu poprawę wzrostu Liriodendron tulipifera.
Badanie przeprowadzono w szklarni badawczej roślin domowych Islamic Azad University w Jiloft w Iranie. Przygotowano jednolite przeszczepy korzeniowe schefflera karłowatego o wysokości 25 ± 5 cm (rozmnożone sześć miesięcy przed eksperymentem) i zasiano je w doniczkach. Doniczka jest plastikowa, czarna, o średnicy 20 cm i wysokości 30 cm16.
Podłoże hodowlane w tym badaniu stanowiła mieszanka torfu, próchnicy, płukanego piasku i łuski ryżowej w stosunku 1:1:1:1 (objętościowo)16. Umieść warstwę kamyków na dnie doniczki w celu zapewnienia drenażu. Średnie temperatury dzienne i nocne w szklarni późną wiosną i latem wynosiły odpowiednio 32 ± 2°C i 28 ± 2°C. Wilgotność względna wynosi > 70%. Do nawadniania użyj systemu zraszania. Średnio rośliny są podlewane 12 razy dziennie. Jesienią i latem czas każdego podlewania wynosi 8 minut, a odstęp między podlewaniami wynosi 1 godzinę. Rośliny uprawiano podobnie cztery razy, 2, 4, 6 i 8 tygodni po siewie, z roztworem mikroelementów (Ghoncheh Co., Iran) o stężeniu 3 ppm i nawadniano za każdym razem 100 ml roztworu. Roztwór odżywczy zawiera N 8 ppm, P 4 ppm, K 5 ppm oraz pierwiastki śladowe Fe, Pb, Zn, Mn, Mo i B.
Trzy stężenia kwasu giberelinowego i regulatora wzrostu roślin benzyloadeniny (zakupionego od Sigma) przygotowano w stężeniach 0, 100 i 200 mg/l i rozpylono na pąki roślin w trzech etapach w odstępie 15 dni17. W roztworze zastosowano Tween 20 (0,1%) (zakupiony od Sigma), aby zwiększyć jego trwałość i szybkość wchłaniania. Wczesnym rankiem rozpyl hormony na pąki i liście Liriodendron tulipifera za pomocą opryskiwacza. Rośliny spryskano wodą destylowaną.
Wysokość rośliny, średnica łodygi, powierzchnia liści, zawartość chlorofilu, liczba międzywęźli, długość gałęzi bocznych, liczba gałęzi bocznych, objętość korzeni, długość korzeni, masa liści, korzeni, łodygi i suchej świeżej masy, zawartość barwników fotosyntetycznych (chlorofil a, chlorofil b). W różnych metodach mierzono całkowitą zawartość chlorofilu, karotenoidów, całkowitą zawartość barwników, cukrów redukujących i węglowodanów rozpuszczalnych.
Zawartość chlorofilu w młodych liściach mierzono 180 dni po oprysku za pomocą miernika chlorofilu (Spad CL-01) od 9:30 do 10 rano (ze względu na świeżość liści). Dodatkowo mierzono powierzchnię liści 180 dni po oprysku. Zważ trzy liście z góry, środka i dołu łodygi z każdej doniczki. Następnie liście te są używane jako szablony na papierze A4, a powstały wzór jest wycinany. Zmierzono również wagę i powierzchnię jednej kartki papieru A4. Następnie powierzchnię szablonowanych liści obliczano za pomocą proporcji. Dodatkowo objętość korzenia określano za pomocą cylindra miarowego. Suchą masę liści, suchą masę łodygi, suchą masę korzeni i całkowitą suchą masę każdej próbki mierzono poprzez suszenie w piecu w temperaturze 72°C przez 48 godzin.
Zawartość chlorofilu i karotenoidów mierzono metodą Lichtenthalera18. W tym celu 0,1 g świeżych liści rozdrobniono w moździerzu porcelanowym zawierającym 15 ml 80% acetonu, a po przefiltrowaniu zmierzono ich gęstość optyczną za pomocą spektrofotometru przy długościach fal 663,2, 646,8 i 470 nm. Skalibrować urządzenie za pomocą 80% acetonu. Oblicz stężenie pigmentów fotosyntetycznych za pomocą następującego równania:
Wśród nich Chl a, Chl b, Chl T i Car reprezentują odpowiednio chlorofil a, chlorofil b, całkowity chlorofil i karotenoidy. Wyniki przedstawiono w mg/ml rośliny.
Cukry redukujące mierzono metodą Somogy'ego19. W tym celu 0,02 g pędów roślin rozdrabnia się w porcelanowym moździerzu z 10 ml wody destylowanej i wlewa do małej szklanki. Podgrzewa się szklankę do wrzenia, a następnie filtruje zawartość przez bibułę filtracyjną Whatman nr 1, aby uzyskać ekstrakt roślinny. Przenosi się 2 ml każdego ekstraktu do probówki i dodaje 2 ml roztworu siarczanu miedzi. Przykrywa się probówkę watą i ogrzewa w łaźni wodnej w temperaturze 100°C przez 20 minut. Na tym etapie Cu2+ przekształca się w Cu2O poprzez redukcję monosacharydu aldehydowego, a na dnie probówki widoczny jest kolor łososiowy (terakotowy). Po ostygnięciu probówki dodaje się 2 ml kwasu fosfomolibdenowego, a pojawi się niebieski kolor. Energicznie potrząsa się probówką, aż kolor równomiernie rozłoży się w całej probówce. Odczytuje się absorbancję roztworu przy 600 nm za pomocą spektrofotometru.
Oblicz stężenie cukrów redukujących za pomocą krzywej standardowej. Stężenie węglowodanów rozpuszczalnych określono metodą Falesa20. W tym celu 0,1 g kiełków zmieszano z 2,5 ml 80% etanolu w temperaturze 90 °C przez 60 min (dwa etapy po 30 min każdy), aby wyekstrahować węglowodany rozpuszczalne. Następnie ekstrakt przefiltrowano, a alkohol odparowano. Powstały osad rozpuszczono w 2,5 ml wody destylowanej. Wlać 200 ml każdej próbki do probówki i dodać 5 ml wskaźnika antronowego. Mieszaninę umieszczono w łaźni wodnej w temperaturze 90 °C na 17 min, a po ochłodzeniu określono jej absorbancję przy 625 nm.
Eksperyment był eksperymentem czynnikowym opartym na całkowicie zrandomizowanym projekcie z czterema powtórzeniami. Procedura PROC UNIVARIATE jest używana do badania normalności rozkładów danych przed analizą wariancji. Analiza statystyczna rozpoczęła się od opisowej analizy statystycznej, aby zrozumieć jakość zebranych danych surowych. Obliczenia są zaprojektowane tak, aby uprościć i skompresować duże zbiory danych, aby ułatwić ich interpretację. Następnie przeprowadzono bardziej złożone analizy. Test Duncana został wykonany przy użyciu oprogramowania SPSS (wersja 24; IBM Corporation, Armonk, NY, USA) w celu obliczenia średnich kwadratów i błędów eksperymentalnych w celu określenia różnic między zbiorami danych. Wielokrotny test Duncana (DMRT) został użyty do zidentyfikowania różnic między średnimi przy poziomie istotności (0,05 ≤ p). Współczynnik korelacji Pearsona (r) został obliczony przy użyciu oprogramowania SPSS (wersja 26; IBM Corp., Armonk, NY, USA) w celu oceny korelacji między różnymi parami parametrów. Ponadto przeprowadzono analizę regresji liniowej przy użyciu oprogramowania SPSS (wersja 26), aby przewidzieć wartości zmiennych pierwszego roku na podstawie wartości zmiennych drugiego roku. Z drugiej strony przeprowadzono analizę regresji krokowej z p < 0,01, aby zidentyfikować cechy, które mają krytyczny wpływ na liście schefflery karłowatej. Przeprowadzono analizę ścieżki, aby określić bezpośrednie i pośrednie efekty każdego atrybutu w modelu (na podstawie cech, które lepiej wyjaśniają zmienność). Wszystkie powyższe obliczenia (normalność rozkładu danych, prosty współczynnik korelacji, regresja krokowa i analiza ścieżki) przeprowadzono przy użyciu oprogramowania SPSS wersja 26.
Wybrane próbki roślin uprawnych były zgodne z odpowiednimi wytycznymi instytucjonalnymi, krajowymi i międzynarodowymi, a także z wewnętrznym ustawodawstwem Iranu.
Tabela 1 przedstawia statystyki opisowe średniej, odchylenia standardowego, minimum, maksimum, zakresu i fenotypowego współczynnika zmienności (CV) dla różnych cech. Spośród tych statystyk CV umożliwia porównywanie atrybutów, ponieważ jest bezwymiarowe. Cukry redukujące (40,39%), sucha masa korzeni (37,32%), świeża masa korzeni (37,30%), stosunek cukru do cukru (30,20%) i objętość korzeni (30%) mają najwyższe wartości. i zawartość chlorofilu (9,88%). ) i powierzchnia liści mają najwyższy wskaźnik (11,77%) i najniższą wartość CV. Tabela 1 pokazuje, że całkowita masa mokra ma najwyższy zakres. Jednak ta cecha nie ma najwyższego CV. Dlatego do porównywania zmian atrybutów należy używać metryk bezwymiarowych, takich jak CV. Wysokie CV wskazuje na dużą różnicę między zabiegami dla tej cechy. Wyniki tego eksperymentu wykazały duże różnice między zabiegami o niskiej zawartości cukru w suchej masie korzeni, świeżej masie korzeni, stosunku węglowodanów do cukru i charakterystyce objętości korzeni.
Wyniki analizy wariancji (ANOVA) wykazały, że w porównaniu z kontrolą, oprysk dolistny kwasem giberelinowym i benzyloadeniną miał istotny wpływ na wysokość roślin, liczbę liści, powierzchnię liści, objętość korzeni, długość korzeni, indeks chlorofilu, świeżą masę i suchą masę.
Porównanie średnich wartości wykazało, że regulatory wzrostu roślin miały istotny wpływ na wysokość roślin i liczbę liści. Najskuteczniejszymi zabiegami były kwas giberelinowy w stężeniu 200 mg/l i kwas giberelinowy + benzyloadenina w stężeniu 200 mg/l. W porównaniu z kontrolą wysokość roślin i liczba liści wzrosły odpowiednio o 32,92 razy i 62,76 razy (Tabela 2).
Powierzchnia liści znacznie wzrosła we wszystkich wariantach w porównaniu z grupą kontrolną, przy czym maksymalny wzrost zaobserwowano przy stężeniu 200 mg/l kwasu giberelinowego, osiągając 89,19 cm2. Wyniki wykazały, że powierzchnia liści znacznie wzrosła wraz ze wzrostem stężenia regulatora wzrostu (Tabela 2).
Wszystkie zabiegi znacząco zwiększyły objętość i długość korzenia w porównaniu z grupą kontrolną. Połączenie kwasu giberelinowego + benzyloadeniny miało największy wpływ, zwiększając objętość i długość korzenia o połowę w porównaniu z grupą kontrolną (Tabela 2).
Najwyższe wartości średnicy łodygi i długości międzywęźli zaobserwowano odpowiednio w przypadku roślin kontrolnych oraz w przypadku mieszaniny kwasu giberelinowego z benzyloadeniną 200 mg/l.
Wskaźnik chlorofilu wzrósł we wszystkich wariantach w porównaniu do kontroli. Najwyższą wartość tej cechy zaobserwowano po zastosowaniu kwasu giberelinowego + benzyloadeniny 200 mg/l, która była o 30,21% wyższa niż w przypadku kontroli (Tabela 2).
Wyniki pokazały, że leczenie spowodowało istotne różnice w zawartości pigmentu, obniżeniu zawartości cukrów i węglowodanów rozpuszczalnych.
Leczenie kwasem giberelinowym + benzyloadeniną spowodowało maksymalną zawartość pigmentów fotosyntetycznych. Ten znak był istotnie wyższy we wszystkich wariantach niż w kontroli.
Wyniki wykazały, że wszystkie zabiegi mogły zwiększyć zawartość chlorofilu w Schefflera dwarf. Jednak najwyższą wartość tej cechy zaobserwowano w zabiegu z kwasem giberelinowym + benzyloadeniną, która była o 36,95% wyższa niż w przypadku kontroli (Tabela 3).
Wyniki dla chlorofilu b były całkowicie podobne do wyników dla chlorofilu a, jedyną różnicą był wzrost zawartości chlorofilu b, która była o 67,15% wyższa niż w kontroli (tabela 3).
Zabieg spowodował znaczący wzrost całkowitej chlorofilu w porównaniu z kontrolą. Zabieg kwasem giberelinowym 200 mg/l + benzyloadeniną 100 mg/l doprowadził do najwyższej wartości tej cechy, która była o 50% wyższa niż w kontroli (Tabela 3). Zgodnie z wynikami, kontrola i zabieg benzyloadeniną w dawce 100 mg/l doprowadził do najwyższych wskaźników tej cechy. Liriodendron tulipifera ma najwyższą wartość karotenoidów (Tabela 3).
Wyniki wykazały, że po zastosowaniu kwasu giberelinowego w stężeniu 200 mg/l zawartość chlorofilu a znacznie wzrosła w stosunku do chlorofilu b (rys. 1).
Wpływ kwasu giberelinowego i benzyloadeniny na proporcje a/b Ch. Schefflera karłowatego. (GA3: kwas giberelinowy i BA: benzyloadenina). Te same litery na każdym rysunku wskazują, że różnica nie jest istotna (P < 0,01).
Wpływ każdego zabiegu na świeżą i suchą masę drewna schefflery karłowatej był istotnie wyższy niż w przypadku kontroli. Kwas giberelinowy + benzyloadenina w stężeniu 200 mg/l były najskuteczniejszym zabiegiem, zwiększając świeżą masę o 138,45% w porównaniu z kontrolą. W porównaniu z kontrolą, wszystkie zabiegi, z wyjątkiem stężeń 100 mg/l benzyloadeniny, istotnie zwiększyły suchą masę roślin, a stęż. 200 mg/l kwasu giberelinowego + benzyloadeniny dało najwyższą wartość dla tej cechy (Tabela 4).
Większość wariantów różniła się pod tym względem istotnie od kontroli, przy czym najwyższe wartości odnotowano dla stężeń 100 i 200 mg/l benzyloadeniny oraz 200 mg/l kwasu giberelinowego + benzyloadeniny (rys. 2).
Wpływ kwasu giberelinowego i benzyloadeniny na stosunek węglowodanów rozpuszczalnych i cukrów redukujących u schefflery karłowatej. (GA3: kwas giberelinowy i BA: benzyloadenina). Te same litery na każdym rysunku oznaczają brak istotnej różnicy (P < 0,01).
Przeprowadzono analizę regresji krok po kroku, aby określić rzeczywiste atrybuty i lepiej zrozumieć związek między zmiennymi niezależnymi a liczbą liści w Liriodendron tulipifera. Objętość korzeni była pierwszą zmienną wprowadzoną do modelu, wyjaśniającą 44% zmienności. Następną zmienną była świeża masa korzeni, a te dwie zmienne wyjaśniały 63% zmienności liczby liści (Tabela 5).
Analiza ścieżki została przeprowadzona w celu lepszej interpretacji regresji krok po kroku (Tabela 6 i Rysunek 3). Największy pozytywny wpływ na liczbę liści był związany ze świeżą masą korzeni (0,43), która była dodatnio skorelowana z liczbą liści (0,47). Wskazuje to, że ta cecha bezpośrednio wpływa na plon, podczas gdy jej pośredni wpływ poprzez inne cechy jest nieistotny, i że ta cecha może być stosowana jako kryterium selekcji w programach hodowlanych dla schefflery karłowatej. Bezpośredni wpływ objętości korzeni był ujemny (−0,67). Wpływ tej cechy na liczbę liści jest bezpośredni, wpływ pośredni jest nieistotny. Wskazuje to, że im większa objętość korzeni, tym mniejsza liczba liści.
Rysunek 4 pokazuje zmiany w regresji liniowej objętości korzeni i cukrów redukujących. Zgodnie ze współczynnikiem regresji każda jednostka zmiany długości korzeni i węglowodanów rozpuszczalnych oznacza, że objętość korzeni i cukry redukujące zmieniają się o 0,6019 i 0,311 jednostki.
Współczynnik korelacji Pearsona cech wzrostu pokazano na rysunku 5. Wyniki pokazały, że liczba liści i wysokość rośliny (0,379*) miały najwyższą dodatnią korelację i istotność.
Mapa cieplna zależności między zmiennymi w współczynnikach korelacji tempa wzrostu. # Oś Y: 1-Indeks Ch., 2-Międzywęźle, 3-LAI, 4-N liści, 5-Wysokość odnóży, 6-Średnica łodygi. # Wzdłuż osi X: A – indeks H., B – odległość między węzłami, C – LAY, D – N. liścia, E – wysokość nogawki, F – średnica łodygi.
Współczynnik korelacji Pearsona dla cech związanych z mokrą masą pokazano na rysunku 6. Wyniki pokazują zależność między mokrą masą liści a suchą masą części nadziemnej (0,834**), całkowitą suchą masą (0,913**) i suchą masą korzeni (0,562*). Całkowita sucha masa wykazuje najwyższą i najbardziej znaczącą dodatnią korelację z suchą masą pędów (0,790**) i suchą masą korzeni (0,741**).
Mapa cieplna zależności pomiędzy zmiennymi współczynnika korelacji świeżej masy. # Oś Y: 1 – masa świeżych liści, 2 – masa świeżych pąków, 3 – masa świeżych korzeni, 4 – całkowita masa świeżych liści. # Oś X przedstawia: A – masa świeżych liści, B – masa świeżych pąków, CW – masa świeżych korzeni, D – całkowita masa świeżych liści.
Współczynniki korelacji Pearsona dla cech związanych z suchą masą przedstawiono na rysunku 7. Wyniki pokazują, że najwyższe wartości mają sucha masa liści, sucha masa pąków (0,848**) i całkowita sucha masa (0,947**), sucha masa pąków (0,854**) i całkowita sucha masa (0,781**). korelacja jest dodatnia i korelacja istotna.
Mapa cieplna relacji pomiędzy zmiennymi współczynnika korelacji masy suchej. # Oś Y przedstawia: 1-masa sucha liścia, 2-masa sucha pąka, 3-masa sucha korzeni, 4-całkowita masa sucha. # Oś X: A-masa sucha liścia, B-masa sucha pąka, CW-masa sucha korzenia, D-całkowita masa sucha.
Współczynnik korelacji Pearsona właściwości pigmentów pokazano na rysunku 8. Wyniki pokazują, że chlorofil a i chlorofil b (0,716**), całkowity chlorofil (0,968**) i całkowite pigmenty (0,954**); chlorofil b i całkowity chlorofil (0,868**) i całkowite pigmenty (0,851**); całkowity chlorofil ma najwyższą dodatnią i istotną korelację z całkowitymi pigmentami (0,984**).
Mapa cieplna relacji między zmiennymi współczynnika korelacji chlorofilu. # Osie Y: 1- Kanał a, 2- Kanał. b,3 – stosunek a/b, 4 kanały. Łącznie, 5-karotenoidy, 6-wydajność pigmentów. # Osie X: A-Ch. aB-Ch. b,C- stosunek a/b, D-Ch. Całkowita zawartość, E-karotenoidy, F-wydajność pigmentów.
Dwarf Schefflera jest popularną rośliną domową na całym świecie, a jej wzrost i rozwój obecnie cieszą się dużym zainteresowaniem. Zastosowanie regulatorów wzrostu roślin spowodowało znaczące różnice, przy czym wszystkie zabiegi zwiększały wysokość roślin w porównaniu z kontrolą. Chociaż wysokość roślin jest zwykle kontrolowana genetycznie, badania pokazują, że stosowanie regulatorów wzrostu roślin może zwiększać lub zmniejszać wysokość roślin. Wysokość roślin i liczba liści traktowanych kwasem giberelinowym + benzyloadeniną 200 mg/l były najwyższe, osiągając odpowiednio 109 cm i 38,25. Zgodnie z wcześniejszymi badaniami (SalehiSardoei i in.52) i Spathiphyllum23, podobne wzrosty wysokości roślin spowodowane leczeniem kwasem giberelinowym zaobserwowano w przypadku nagietków doniczkowych, albus alba21, liliowców22, liliowców, agaru i lilii pokojowych.
Kwas giberelinowy (GA) odgrywa ważną rolę w różnych procesach fizjologicznych roślin. Pobudza podział komórek, wydłużanie komórek, wydłużanie łodygi i zwiększanie rozmiaru24. GA indukuje podział komórek i wydłużanie wierzchołków pędów i merystemów25. Zmiany w liściach obejmują również zmniejszenie grubości łodygi, mniejszy rozmiar liścia i jaśniejszy zielony kolor26. Badania wykorzystujące czynniki hamujące lub stymulujące wykazały, że jony wapnia ze źródeł wewnętrznych działają jako drugie przekaźniki w szlaku sygnałowym gibereliny w koronie sorgo27. HA zwiększa długość rośliny poprzez stymulację syntezy enzymów, które powodują rozluźnienie ściany komórkowej, takich jak XET lub XTH, ekspansyny i PME28. Powoduje to powiększanie się komórek, gdy ściana komórkowa rozluźnia się, a woda wnika do komórki29. Zastosowanie GA7, GA3 i GA4 może zwiększyć wydłużanie łodygi30,31. Kwas giberelinowy powoduje wydłużanie łodygi u roślin karłowych, a u roślin rozetowych opóźnia wzrost liści i wydłużanie międzywęźli32. Jednak przed fazą reprodukcyjną długość łodygi zwiększa się do 4–5 razy w stosunku do pierwotnej wysokości33. Proces biosyntezy GA w roślinach podsumowano na rysunku 9.
Biosynteza GA w roślinach i poziomy endogennego bioaktywnego GA, schematyczne przedstawienie roślin (po prawej) i biosyntezy GA (po lewej). Strzałki są oznaczone kolorami, aby odpowiadać formie HA wskazanej wzdłuż szlaku biosyntezy; czerwone strzałki wskazują na obniżone poziomy GC z powodu lokalizacji w organach roślinnych, a czarne strzałki wskazują na zwiększone poziomy GC. W wielu roślinach, takich jak ryż i arbuz, zawartość GA jest wyższa u podstawy lub dolnej części liścia30. Ponadto niektóre raporty wskazują, że zawartość bioaktywnego GA zmniejsza się, gdy liście wydłużają się od podstawy34. Dokładne poziomy giberelin w tych przypadkach są nieznane.
Regulatory wzrostu roślin również znacząco wpływają na liczbę i powierzchnię liści. Wyniki wykazały, że zwiększenie stężenia regulatora wzrostu roślin spowodowało znaczny wzrost powierzchni i liczby liści. Wykazano, że benzyloadenina zwiększa produkcję liści kalii15. Zgodnie z wynikami tego badania, wszystkie zabiegi poprawiły powierzchnię i liczbę liści. Kwas giberelinowy + benzyloadenina okazały się najskuteczniejszym zabiegiem i dały największą liczbę i powierzchnię liści. Podczas uprawy schefflery karłowej w pomieszczeniu może wystąpić zauważalny wzrost liczby liści.
Leczenie GA3 zwiększyło długość międzywęźli w porównaniu z benzyloadeniną (BA) lub brakiem leczenia hormonalnego. Wynik ten jest logiczny, biorąc pod uwagę rolę GA w promowaniu wzrostu7. Wzrost łodygi również wykazał podobne wyniki. Kwas giberelinowy zwiększył długość łodygi, ale zmniejszył jej średnicę. Jednak łączone stosowanie BA i GA3 znacznie zwiększyło długość łodygi. Wzrost ten był większy w porównaniu z roślinami traktowanymi BA lub bez hormonu. Chociaż kwas giberelinowy i cytokininy (CK) ogólnie promują wzrost roślin, w niektórych przypadkach mają przeciwne skutki dla różnych procesów35. Na przykład zaobserwowano negatywną interakcję we wzroście długości hipokotylu w roślinach traktowanych GA i BA36. Z drugiej strony BA znacznie zwiększył objętość korzeni (Tabela 1). Zwiększona objętość korzeni spowodowana egzogennym BA została zgłoszona u wielu roślin (np. gatunków Dendrobium i Orchid)37,38.
Wszystkie zabiegi hormonalne zwiększyły liczbę nowych liści. Naturalny wzrost powierzchni liści i długości łodygi dzięki zabiegom łączonym jest pożądany komercyjnie. Liczba nowych liści jest ważnym wskaźnikiem wzrostu wegetatywnego. Stosowanie hormonów egzogennych nie było stosowane w komercyjnej produkcji Liriodendron tulipifera. Jednak efekty GA i CK wspomagające wzrost, stosowane w równowadze, mogą dostarczyć nowych spostrzeżeń na temat poprawy uprawy tej rośliny. Co godne uwagi, synergistyczny efekt leczenia BA + GA3 był wyższy niż efekt GA lub BA podawanych osobno. Kwas giberelinowy zwiększa liczbę nowych liści. W miarę rozwoju nowych liści, zwiększenie liczby nowych liści może ograniczyć wzrost liści39. Donoszono, że GA poprawia transport sacharozy z ujść do organów źródłowych40,41. Ponadto egzogenne stosowanie GA w roślinach wieloletnich może promować wzrost organów wegetatywnych, takich jak liście i korzenie, zapobiegając w ten sposób przejściu ze wzrostu wegetatywnego do wzrostu reprodukcyjnego42.
Wpływ GA na zwiększenie suchej masy roślin można wyjaśnić wzrostem fotosyntezy spowodowanym zwiększeniem powierzchni liści43. Donoszono, że GA powoduje zwiększenie powierzchni liści kukurydzy34. Wyniki wykazały, że zwiększenie stężenia BA do 200 mg/l może zwiększyć długość i liczbę gałęzi drugorzędnych oraz objętość korzeni. Kwas giberelinowy wpływa na procesy komórkowe, takie jak stymulowanie podziału i wydłużania komórek, poprawiając w ten sposób wzrost wegetatywny43. Ponadto HA rozszerza ścianę komórkową poprzez hydrolizę skrobi do cukru, zmniejszając w ten sposób potencjał wodny komórki, powodując wnikanie wody do komórki i ostatecznie prowadząc do wydłużenia komórki44.
Czas publikacji: 11-06-2024